aaaaCzęsto usiłujemy ukryć nasze uczucia przed tymi, którzy powinni je poznać.aaaa [ Pobierz całość w formacie PDF ]

RAPORT Z 7 ĆWICZEŃ

Nazwisko

Imię

Data

Grupa

Numer indeksu

Hut

Malwina

19.05.2015

V

121268

Cel doświadczenia

Oceny toksykologiczne i inne oceny bezpieczeństwa (w tym oceny bezpieczeństwa produktów i urządzeń dla medycyny i stomatologii oraz weterynarii)

Kategoria badań chorób ludzi i zwierząt

Inne choroby człowieka

Hipoteza badawcza

Ekstrakt z S.barteri nie wywołuje działania toksycznego u myszy szczepu Swiss i albinotycznych szczurów Wistar.

Typ modelu

50 albinotycznych myszy szczepu Swiss (25 samców i 25 samic) w wieku 8-10 tygodni o wadze 18-24 g.
50 albinotycznych szczurów Wistar (25 samców i 25 samic) w wieku 8-10 tygodni o wadze 120-185 g.
Pozyskane z Uniwersytetu Dschang.
Warunki przetrzymywania:
-standardowe plastikowe klatki
-rytm dobowy 12h dzień/12h noc
-temperatura 23 +/- 2°C
-karmienie standardową karmą
-nieograniczony dostęp do pożywienia oraz wody

Projekt eksperymentu (plan badania, wielkość grup badawczych, rodzaje grup badawczych itp.)

Procedura 1- badanie toksyczności ostrej
-50 myszy przydzielić losowo do 5 grup po 10 osobników w jednej grupie (5 samic i 5 samców)
grupa 1 (kontrola): 
-podawać doustnie nośnik (2.5% (v/v) DMSO/tween 80)
grupy 2,3,4,5 (badawcze):
-podawać dożołądkowo wzrastające dawki ekstraktu z S.barteri  (ekstrakt rozpuszczony w nośniku 2.5% (v/v) DMSO/tween 80) w dawkach: 2000, 4000, 8000 i 16000 mg/kg masy ciała
-pozbawić myszy pokarmu przez 18 godzin przed podaniem nośnika lub ekstraktu
-następnie przez 3 godziny obserwować aktywność myszy, reakcję na hałas, reakcję na szczypanie, ilość wydalanych przez nie odchodów i śmiertelność
-po tym okresie zapewnić myszom nieograniczony dostęp do wody i pożywienia
-notować ilość martwych myszy przez 48 godzin po podaniu ekstraktu
-ocalałe zwierzęta monitorować przez 14 dni od podania ekstraktu pod względem zmian masy ciała, zużycia żywności i wody
Procedura 2- badanie toksyczności podostrej
-50 albinotycznych szczurów podzielić na 5 grup po 10 zwierząt w każdej (5 samic i 5 samców)
grupa 12 (kontrola): 
-podawać doustnie nośnik (2.5% (v/v) DMSO/tween 80)
grupy 22,32,42,52 (badawcze):
-podawać dożołądkowo różne dawki ekstraktu z S.barteri: 100, 200, 400 i 800 mg/kg masy ciała raz dziennie przez 28 dni

Procedura 3- monitorowanie zwierząt
-przyjmowanie pokarmu i zmiany masy ciała zwierząt rejestrowano co 2 dzień

Procedura 4- pobranie próbek do dalszych analiz
-28 dnia eksperymentu szczury poddać całonocnemu głodzeniu a następnie zbierać ich mocz umieszczając je pojedynczo w specjalnych metabolicznych klatkach:

-szczury uśpić i pobrać im krew z serca do dalszych analiz

Procedura 5- uśmiercenie zwierząt
-zwierzęta zabić
-narządy pobrać do badań histopatologicznych

Zastosowane metody statystyczne

Obliczenie standardowego błędu pomiaru, Test ANOVA, test Wallera-Duncana

Źródło danych

http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4387785/